总RNA的提

仪器和主要试剂：

1. 紫外分光光度计、微量加样枪、灭菌超薄PCR反应管

2. Trizol试剂

3. 氯仿

4. 异丙醇

5. 75℅乙醇

6. 无RNase的水或0.5℅SDS (溶液均需用DEPC处理过的水配制)

实验方法：

（一）RNA提取

1. 匀浆处理:

a.组织 将组织在液氮中磨碎，每50-100mg组织加入1ml Trizol，用匀浆仪进行匀浆处理。样品体积不应超过Trizol体积10℅。

b.单层培养细胞 直接在培养板中加入Trizol裂解细胞，每10cm2面积加1ml，用移液器吸打几次。Trizol的用量应根据培养板面积而定，不取决于细胞数。Trizol加量不足可能导致提取的RNA有DNA污染。

c.细胞悬液 离心收集细胞，每5-10×10动物、植物、酵母细胞或1×10细菌细胞加入1ml Trizol，反复吸打。加Trizol之前不要洗涤细胞以免mRNA降解。一些酵母和细菌细胞需用匀浆仪处理。

(注意：匀浆一定要彻底，是提取高质量RNA的前提；细胞数量与Trizol的比例，细胞的数量不能过多。)

2. 将匀浆样品在室温（15-30℃）放置5 min，使核酸蛋白复合物完全分离。

3. 可选步骤：如样品中含有较多蛋白质，脂肪，多糖或胞外物质（肌肉，植物结节部分等）可于2-8 ℃ 10000×g离心10 min，取上清。离心得到的沉淀中包括细胞外膜，多糖，高分子量DNA，上清中含有RNA。处理脂肪组织时，上层有大量油脂应去除。取澄清的匀浆液进行下一步操作。

4. 每使用1ml Trizol加入0.2ml氯仿，剧烈振荡15s，室温放置3 min。

(注意：此步振荡非常重要，建议在旋涡振荡器上进行。)

5. 2-8℃10000×g离心15 min。样品分为三层：底层为黄色（红或绿）有机相，上层为无色水相和一个中间层。RNA主要在水相中，水相体积约为所用Trizol试剂的60℅。

6. 把水相转移到新管中（如要分离DNA和蛋白质可保留有机相），用异丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1ml Trizol加入0.5ml异丙醇，室温放置10 min。

7. 2-8℃10000g离心10 min，离心前看不出RNA沉淀，离心后在管侧和管底出现胶状沉淀。移去上清。

8. 用75℅乙醇洗涤RNA沉淀。每使用1ml Trizol至少加1ml 75℅乙醇。2-8℃不超过7500g离心5 min，弃上清。

9. 室温放置干燥或真空抽干RNA沉淀，不要晾得过干，否则不易溶解，大约晾5-10min。加入25-200 l无RNase的水，-70℃保存。 67