细胞培养及无菌操作(7)

发布时间:2021-06-06

你还在为没有做过细胞培养实验而烦恼吗?你还在为做细胞实验而痛苦吗?看了这个《细胞培养的有关名词及其概念》相信一定会释疑我的烦恼

五 细胞传代培养(消化法)

具体操作:

一. 传代前准备:

1.预热培养用液:把已经配制好的装有培养液、PBS液和胰蛋白酶的瓶子放入37℃水浴锅内预热。

2.用75%酒精擦拭经过紫外线照射的超净工作台和双手。

3.正确摆放使用的器械:保证足够的操作空间,不仅便于操作而且可减少污染。

4.点燃酒精灯:注意火焰不能太小。

5.准备好将要使用的消毒后的空培养瓶,放入微波炉内高火,8分钟再次消毒。

6.取出预热好的培养用液:取出已经预热好的培养用液,用酒精棉球擦拭好后方能放入超净台内。

7.从培养箱内取出细胞:注意取出细胞时要旋紧瓶盖,用酒精棉球擦拭显微镜的台面,再在镜下观察细胞。

8.打开瓶口:将各瓶口一一打开,同时要在酒精灯上烧口消毒。

二.胰蛋白酶消化;

1.加入消化液:小心吸出旧培养液,用PBS清洗(冲洗),加入适量消化液(胰蛋白酶液),注意消化液的量以盖住细胞最好,最佳消化温度是37℃。

2. 显微镜下观察细胞:倒置显微镜下观察消化细胞,若胞质回缩,细胞之间不再连接成片,表明此时细胞消化度。

3.吸弃消化液加入培养液:弃去胰蛋白酶液,注意更换吸管,加入新鲜的培养液。

三.吹打分散细胞:

1.吹打制悬:用滴管将已经消化细胞吹打成细胞悬液。

2.吸细胞悬液入离心管:将细胞悬液吸入10ml离心管中。

3.平衡离心:平衡后将离心管放入台式离心机中,以1000转/分钟离心6-8分钟。

4.弃上清液,加入新培养液:弃去上清液,加入2ml培养液,用滴管轻轻吹打细胞制成细胞悬液。

四.分装稀释细胞:

1.分装:将细胞悬液吸出分装至2-3个培养瓶中,加入适量培养基旋紧瓶盖。

2.显微镜下观察细胞:倒置显微镜下观察细胞量,必要是计数。注意密度过小会影响传代细胞的生长,传代细胞的密度应该不低于5×105/ml。最后要做好标记。

五.继续培养:

用酒精棉球擦拭培养瓶,适当旋松瓶盖,放入CO2培养箱中继续培养。传代细胞2小时后开始贴附在瓶壁上。当生长细胞铺展面积占培养瓶底面积25%时为一个+,占50%为++,占75%时为+++。

六.观察

细胞培养24小时后,即可进行观察,观察的重点如下:

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