2006巴斯德毕赤酵母发酵生产重组人溶菌酶
时间:2026-01-18
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2006巴斯德毕赤酵母发酵生产重组人溶菌酶
第33卷第6期
2006
年北京化工大学学报
JOURNALOFBEIJINGUNIVERSITYOFCHEMICALTECHNOLOGY
Vol.33,No.6
2006
巴斯德毕赤酵母发酵生产重组人溶菌酶
陈晶晶 陈劲春3
(北京化工大学生命科学与技术学院,北京 100029)
摘 要:对巴斯德毕赤酵母GS115菌株在工业培养基中发酵和分离条件进行了研究。结果表明:将传统工业培养基中碳源和氮源的质量浓度分别降低至35g/L和5g/L时,,但培养时间可减少4h,节省了生产成本;维持诱导期间的pH值为410对目标蛋白的表达最有利,酵母分泌蛋白总量的70%,比原来增加了近30%;分离纯化过程,()交换层析柱偶联的分离方法,达到除杂,并浓缩目标蛋白的作用,50;,质量酶活性为8156×10-3mol/(s g)。
关键词:人溶菌酶;毕赤酵母;发酵;分离纯化中图分类号:Q786
,蛋。人溶菌酶(HLZ)是人体内的一种蛋白质,和人体具有天然相容性,临床上应用时,比其他溶菌酶更安全,没有刺激性和副作用[1]。此外,溶菌酶作为食品防腐剂和婴儿食品添加剂,已在食品工业上得到广泛应用[2]。HLZ的溶菌活性比蛋清溶菌酶高出3倍,且热稳定性也高于蛋清溶菌酶的热稳定性[3]。
国内利用毕赤酵母发酵生产HLZ的研究还比较少,有利用大肠杆菌和真菌表达系统的报道,表达最高水平为40mg/L[4]。国外有采用毕赤酵母发酵生产蛋清溶菌酶的报道[5],但没有对HLZ的表达进行进一步研究。本文针对传统工业培养基中碳源、氮源的质量浓度和诱导期间的pH值对重组HLZ表达量的影响进行了研究,提高了重组HLZ的产量,为今后实现重组人溶菌酶的工业化生产提供了参考依据。
GS115,为本实验室保存。
11112 培养基 酵母培养基YPG(质量分数):1%
酵母提取物,2%大豆蛋白胨,1%甘油。工业培养基(g/L):二水硫酸钙0193,硫酸钾1812,七水硫酸镁1419,甘油35,硫酸铵5,柠檬酸三钠1147,011mol/L
的pH值610磷酸钾缓冲液。微量元素(PTM)(g/L):五水硫酸铜610,碘化钾018,一水硫酸锰310,二水钼酸钠012,硼酸012,氯化钴015,氯化锌2010,七水硫酸亚铁6510,生物素012,浓硫酸510mL/L。试剂均为国产生化试剂纯或分析纯。11113 其他材料 SPFF强阳/DEAE弱阴离子交
换层析柱和填料均购自AmershamBiosciences公司。中空纤维膜购自天津膜公司,酵母型重组肠激酶购自罗氏公司,10k透析袋购自北京泽平科技有限公司。112 方法
11211 培养方法 将保存的菌种接到YPG培养基
中,28℃和200r/min的条件下振荡培养12h,然后以5%的接种量转接到工业培养基中,在28℃和200r/min的条件下振荡培养。期间,用氨水调节培
1 材料与方法
111 材料
11111 菌种 含人溶菌酶基因的PichiaPastoris
收稿日期:2005212215
第一作者:女,1981年生,硕士生3通讯联系人
E2mail:jingchunchen@http://
养基的pH值使之保持在515,待甘油耗尽后,饥饿1~2h开始诱导。诱导期调节pH维持在410,每12h补加体积分数015%的甲醇诱导,诱导84h后停
止发酵。
11212 分析方法 将菌液稀释后于波长600nm处
以去离子水为参比,用比色法测定溶液吸光度;测定所取发酵液中的细胞干质量,再除以所取发酵液体
2006巴斯德毕赤酵母发酵生产重组人溶菌酶
第6期 陈晶晶等:巴斯德毕赤酵母发酵生产重组人溶菌酶 35
积即得细胞质量浓度;甘油浓度用高碘酸钠氧化法测定[6];发酵液中总蛋白浓度测定参考考马斯亮蓝染色法[7];发酵液中目标蛋白(重组人溶菌酶原)浓度的测定法是取发酵液离心后的上清走SDS2PAGE,将凝胶进行计算机扫描分析,用BIO2PRINT凝胶成像与分析系统分析目标蛋白的含量,根据考马斯亮蓝染色法测定的发酵液中总蛋白的量推算出目标蛋白浓度。
11213 分离方法 将发酵液离心,收集上清液,用6k~30k的中空纤维膜截留。让收集的蛋白溶液
[8]
故将工业培养基中甘油质量浓度降低至35g/L。
表2 (NH4)2SO4质量浓度对细胞吸光度A600的影响
Table2 Effectof(NH4)2SO4concentrationon
cellabsorbencyA600
ρ((NH4)2SO4)/(g/L)
4578A600
39.849.843.8743.3
先流过SPFF强阳离子交换层析柱,洗脱收集的蛋白液再流过DEAE弱阴离子交换层析柱,收集洗脱峰。强阳离子交换步骤,采用磷酸缓冲体系,pH为710;弱阴离子交换步骤,采用Tris系,pH值为810。到的蛋白液用12。11214
溶液按体积比(1μL酶可以切15mg目标蛋
,当H245g/L
,,适当的减。故(NH4)2SO4质量浓度降低至5g/L。21112 诱导期间pH值的优化 诱导期间考察pH
白计算加酶量)混和均匀,20℃下,酶切8~12h。10倍酶切缓冲体系参见商品化酵母型肠激酶使用说明书。
11215 酶活力测定方法 采用热激法(煮沸裂解
值在315~710范围内对诱导的影响。如图1所示,pH410处目标蛋白条带最清晰,因此维持诱导期间的pH值为410对目标蛋白的表达最有利。此结果表明,在酸性环境中更有利于酵母对碱性蛋白的表达。
法)[9]和溶壁微球菌比浊法[10]测定酶活。
2 结果与讨论
211 发酵条件的优化
因为细胞吸光度与细胞质量浓度成直线关系,故在实际应用中就用细胞吸光度来反映发酵液中细胞质量浓度的大小。
21111 工业培养基中碳源和氮源的优化 在传统
图1 诱导期间不同pH值对目标蛋白表达的
SDS2PAGE电泳图谱分析
Fig.1 SD …… 此处隐藏:4315字,全部文档内容请下载后查看。喜欢就下载吧 ……